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EV 分離方法獨立比較 (2026)

作者:Allyson Markey|2026 年 6 月 17 日

如果你曾經站在存放生物樣本庫血漿的冷凍櫃前,思考哪一種分離方法才能獲得真正的細胞外囊泡(EV),那麼有這種疑問的人絕對不只你一個。分離方法的選擇會帶來實質影響,包括 EV 的產率、純度,甚至後續分析能否順利進行。然而,直到最近,多數已發表的比較研究一次通常只涵蓋兩至三種方法。

 

Figueroa-Hall 以及其他研究人員在 2025 年發表於《Journal of Extracellular Biology》的一項新研究,進行了更廣泛的比較。研究團隊使用少量人類血漿與血清樣本,針對七種商業化及標準方法所涵蓋的五種 EV 分離策略進行比較,並著重於分離總細胞外囊泡(total EVs,TEVs)及星狀膠質細胞分泌的細胞外囊泡(astrocyte-enriched EVs,AEEVs),以應用於神經科學的生物標誌物研究。

 

以下是這項研究中最值得注意的發現。


產率與純度之間確實存在取捨,而且可以量化

這項研究最主要的發現:沉澱法可獲得較高濃度的 EV,管柱層析(size-exclusion chromatography,SEC)則可獲得較高純度的 EV。真正具有參考價值的是,不同方法之間的差異究竟有多大。

 

在以 CD63 測量血漿總 EV 時:

• ExoQuick(沉澱法)獲得最高的產率。

• SmartSEC(SEC 法)的純度為 ExoQuick 的 8.7 倍。

 

在血清總 EV 中:

• SmartSEC 獲得最高的產率。

• **差速超高速離心法(differential ultracentrifugation)**獲得純度最高的樣本,但是其 CD63 產率比 SmartSEC 低了 91 倍。

 

 

這些結果的重點並不是指出某一種方法是「絕對的贏家」,而是適合的方法完全取決於後續分析需求。

如果要使用 Western blot 檢測低豐度蛋白質,就會更重視產率;如果要進行質譜分析或蛋白質體學分析,而脂蛋白污染可能破壞整個分析結果,那麼就會更重視純度。



血清與血漿不能互相替代

在幾乎所有分離方法中,血清TEVs 的四跨膜蛋白濃度均高於血漿TEVs,部分結果的差異甚至可達 5~22 倍。

如果你過去將這兩種檢體基質視為相同,這篇論文提供了一項重要提醒:所選擇的生物流體種類會改變實際測量到的結果。

例外是 Norgen 與超高速離心法。無論起始材料是血清或血漿,這兩種方法得到的 EV 數量都偏低。


Proteinase K 處理並非沒有代價

Proteinase K(PK)經常用於去除與 EV 共同分離的蛋白質。然而,研究結果顯示,無論採用哪一種分離方法,PK 處理都會使 98~100% 的 CD81 與 CD9 訊號消失,而 CD63 訊號則大致得以保留。

如果研究仰賴 CD81 或 CD9 等 EV 表面標誌,在 EV 分離後使用 PK,可能會在不易察覺的情況下,使你原本想要測量的訊號大量流失。


星狀膠質細胞富集 EV 也呈現相同趨勢

研究作者從總 EV 中,以免疫捕捉方式分離 GLAST 陽性的星狀膠質細胞富集 EV(AEEVs)後,仍然觀察到相同的產率與純度取捨關係。

 

由 ExoQuick 分離樣本所得到的 AEEVs,具有最高的粒子濃度,以及最強的 CD81 與 GLAST 流式細胞儀訊號。相較之下,由 SmartSEC 與 qEV 分離樣本所得到的 AEEVs 濃度較低,但是純度較高。

 

對於利用周邊生物流體研究腦來源 EV 生物標誌物的研究人員而言,這是第一項針對這些方法所進行的直接比較研究。這個研究領域目前正快速應用於阿茲海默症、帕金森氏症及重度憂鬱症等疾病。


這些結果對分離方法的選擇有何意義

這篇論文最有價值的貢獻並不是提供一個明確的優勝結果,而是建立一套選擇方法時可使用的思考架構。在選擇 EV 分離方法之前,應先思考以下問題:

 

1. 後續要進行什麼分析?

四跨膜蛋白免疫分析對共同分離蛋白質的容忍度,通常高於質譜分析。

2. 使用血漿還是血清?

兩者並非相同的檢體基質,不能直接視為等效。

3. 可以使用多少樣本體積?

生物樣本庫保存的臨床樣本通常數量有限,因此經常必須選擇可處理 200~500 µL 樣本的方法。

4. 是否需要富集特定 EV 亞群?

在 EV 分離後進行免疫捕捉,可以進一步提高特定亞群的純度,但起始 EV 產率仍然非常重要。

 

 

針對需要在這些條件之間進行權衡的研究團隊,我們提供涵蓋不同 EV 分離需求的工具,包括:

• ExoQuick:適合追求高產率的沉澱法。

• SmartSEC:適合追求高純度的 SEC 法,提供 Single、適合少量樣本的 Mini,以及適合高通量操作的 HT 等規格。

• SmartSEC-DeLipo:在 SEC 分離之外加入脂蛋白去除功能,以達到蛋白質體學分析所需的純度。

• ExoQuick ULTRA:結合沉澱與後續純化的分離方法。

• ExoQuick-TC UltraPure 及 ExoQuick UltraPure:這兩項最新產品以 ExoQuick ULTRA 為基礎,加入額外的化學處理步驟以去除脂蛋白。當研究同時需要高產率與高純度時,前者可提升細胞培養液樣本的處理效果,後者則適用於血清及血漿分析流程。

 

 

enlightened完整論文採開放取用,值得進一步閱讀:

Figueroa-Hall 等人,Journal of Extracellular Biology,2025

 

 

對於如何根據樣本類型或後續應用選擇適合的 EV 分離方法仍有疑問嗎?

mail 歡迎聯絡我們的 EV 專家。

 

 

你可能也會對以下產品感興趣:

• SmartSEC-DeLipo™:結合 SEC 與脂蛋白去除,適合需要蛋白質體學等級純度的應用。

•​​​​​​​ SmartSEC Mini:針對 10~100 µL 少量樣本進行最佳化。

•​​​​​​​ SmartSEC HT:採用 96 孔盤格式,適合高通量操作流程。

•​​​​​​​ SmartSEC-TC:針對細胞培養液進行最佳化。

•​​​​​​​ ​​​​​​​Exo-Flow Capture Kit:利用磁珠免疫捕捉方式富集特定 EV 亞群。

 


資料來源

• System Biosciences. What a New Independent Comparison Tells Us About EV Isolation Methods. 17 June 2026. https://www.systembio.com/what-a-new-independent-comparison-tells-us-about-ev-isolation-methods/

• Figueroa-Hall LK et al. Comparison of Methods for Isolation and Characterization of Total and Astrocyte-Enriched Extracellular Vesicles From Human Serum and Plasma. Journal of Extracellular Biology. 2025;4(2):e70035. doi:10.1002/jex2.70035.

 

本文僅供研究使用。​​​​​​​